Descongelar celulas criopreservadas

UIEEN-PT-001

Autores/as
Afiliaciones

Samantha Ysais Chong

Elaboró

Oscar Medina Contreras

Revisó

Oscar Medina Contreras

Autorizó

Fecha de publicación

11 de octubre de 2025

NotaPropósito

Descongelar una línea celular manteniendo la viabilidad y condiciones de esterilidad para mantenerla in vitro en condiciones apropiadas para su crecimiento, propagación o almacenamiento para los fines que se requiera.

NotaAlcance

Este procedimiento involucra a todo el personal técnico, científico y estudiantes que realicen cultivo celular y que deseen descongelar y cultivar una línea celular en la Unidad de Investigación Epidemiológica en Endocrinología y Nutrición del Instituto Nacional de Salud Hospital Infantil de México Federico Gómez

NotaPolíticas de operación, normas y lineamientos

Es responsabilidad de todo el personal científico, estudiantes y técnicos adscritos a la Unidad de Investigación Epidemiológica en Endocrinología y Nutrición del Hospital Infantil de México Federico Gómez conocer y dar seguimiento a este procedimiento. Los residuos de tipo CRETI (Corrosivas, Reactivas, Explosivas, Toxicas e Inflamables) se deberán eliminar con base en su clasificación y especificaciones de manejo según la Norma Oficial Mexicana NOM-087-ECOL-SSA1-2002; así como sus características intrínsecas y su toxicidad al ambiente según la NOM-052- SEMARNAT-2005

Descripción del Protocolo

NotaPasos
  •  Retirar el criovial del tanque de nitrógeno líquido  Rápidamente colocar el criovial en baño maría a 37°C sin sumergir la tapa, mover ligeramente el vial hasta que se descongele parcialmente ~60%  Rociar y limpiar el criovial con etanol al 70% y transferir por inversión el contenido del vial a un tubo Falcon de 15 ml en el cual previamente se deben haber colocado 9 ml de medio de cultivo óptimo para la línea celular (suplementado).  Centrifugar a 1,500 rpm a 4°C por 5 min  Decantar el sobrenadante y resuspender gentilmente el pellet con 10 ml de medio de cultivo precalentado a 37°C en baño maría  Transferir la suspensión celular a una botella de cultivo seleccionada según los requerimientos de la línea celular. La botella debe ser correctamente rotulada con el nombre de la línea, número de pase celular, fecha y nombre de quien realiza el procedimiento  Observar las células al microscopio  Incubar a 37°C con 5% de CO2 y ~85-95% de humedad  Continuar el cultivo celular según los requerimientos de cada línea y de la estrategia experimental
  • el protocolo será llevado a cabo con técnica aséptica en campana de flujo laminar

Diagrama de Flujo

Figura 1. Diagrama de flujo

Anexos

geles

Tabla 1: Tamaño de ADN y porcentaje de gel
Tamaño (kb) Concentración
>2 0.6%
1-2 0.8%
0.5-1 1%
0.2-0.5 1.5%
<0.2 2%

Reactivos y Soluciones

  1. Reactivos
  • UltraPure Agarose de Invitrogen
  • SYBR SAFE
  • Buffer carga 6X DNA Loading Dye
  • Marcador de peso molecular
  • TAE 1X
  1. TAE
Tabla 2: Preparación de TAE
1X 50X
Tris 40 mM 242 g
Ácido Acético 20 mM 57.1 mL
Na2EDTA-2H2O 1 mM 18.61 g
dH2O1 1 L 1 L

Documentos de referencia

Animal Cell Culture Guide. (s. f.). ATCC. https://www.atcc.org/resources/culture-guides/animal-cell-culture-guide Thawing of frozen cell lines (2020) Sigma Aldrich; ECACC Laboratory Handbook 4° ed. https://www.sigmaaldrich.com/MX/es/technical-documents/protocol/cell-culture-and-cell-culture-analysis/mammalian-cell-culture/thawing-of-frozen-cell-lines?srsltid=AfmBOorDbumsK7KL4YfndwpfPTM_xqbraqD5JZw2OI7F7cuWF3Rgpo7B Current Protocols in Molecular Biology, Appendix 3, F.12, Supplement 74, Frederick M. Ausubel et al. 2003.

Notas

  1. aforar a↩︎